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轉(zhuǎn)錄組是某個物種或者特定細(xì)胞類型產(chǎn)生的所有轉(zhuǎn)錄本的集合，轉(zhuǎn)錄組測序(RNA-seq) 是zui近發(fā)展起來的利用深度測序技術(shù)進(jìn)行轉(zhuǎn)錄分析的方法,可以對全轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行系統(tǒng)的研究。
Roche GS FLX Titanium 、IlluminaSolexa GA IIx和AB SOLID 4均可以對轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行測序， Roche GS FLX Titanium與IlluminaSolexa GA IIx和AB SOLID 4相比，擁有更長的讀長和較小的數(shù)據(jù)量，適用于表達(dá)量較高基因的RNA全長測序。但是對低表達(dá)豐度的基因，可能需要多次測序才能得到足夠的數(shù)據(jù)，成本比較高 ，而IlluminaSolexa GA IIx和AB SOLID 4數(shù)據(jù)讀取量大，能夠得到較高的覆蓋率，可以較好的降低成本。若是位置基因組序列的物種，則Roche GS FLX Titanium測序更有優(yōu)勢，其較長的讀長便于拼接，獲得更好的轉(zhuǎn)錄本數(shù)據(jù)。
轉(zhuǎn)錄組測序可以供研究者在轉(zhuǎn)錄本結(jié)構(gòu)研究（基因邊界鑒定、可變剪切研究等），轉(zhuǎn)錄本變異研究（如基因融合、編碼區(qū) SNP研究），非編碼區(qū)域功能研究（Non-coding RNA研究、miRNA前體研究等），基因表達(dá)水平研究以及全新轉(zhuǎn)錄本發(fā)現(xiàn)等方面進(jìn)行深入研究。
1研究轉(zhuǎn)錄組的方法有哪些？
答：目前研究轉(zhuǎn)錄組的方法主要三種，基于雜交技術(shù)的cDNA芯片和寡聚核苷酸芯片，基于sanger測序法的SAGE (serial analysis of gene expression)、LongSAGE和MPSS(massively parallel signature sequencing)，基于第二代測序技術(shù)的轉(zhuǎn)錄組測序，又稱為RNA-Seq。
2轉(zhuǎn)錄組測序比其他研究方法有哪些優(yōu)勢?
答：轉(zhuǎn)錄組測序具有以下優(yōu)勢：
（1）可以直接測定每個轉(zhuǎn)錄本片段序列、單核苷酸分辨率的準(zhǔn)確度，同時不存在傳統(tǒng)微陣列雜交的熒光模擬信號帶來的交叉反應(yīng)和背景噪音問題；（2）靈敏度高，可以檢測細(xì)胞中少至幾個拷貝的稀有轉(zhuǎn)錄本；（3）可以對任意物種進(jìn)行全基因組分析，無需預(yù)先設(shè)計特異性探針，因此無需了解物種基因信息，能夠直接對任何物種進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析，同時能夠檢測未知基因，發(fā)現(xiàn)新的轉(zhuǎn)錄本，并準(zhǔn)確地識別可變剪切位點及cSNP，UTR區(qū)域。（4）檢測范圍廣，高于6個數(shù)量級的動態(tài)檢測范圍，能夠同時鑒定和定量稀有轉(zhuǎn)錄本和正常轉(zhuǎn)錄本。
3轉(zhuǎn)錄組測序有什么樣的樣品要求？
答： （1） 樣品純度要求： OD值應(yīng)在1.8至2.2之間；電泳檢測28S:18S至少大于1.8。 （2）樣品濃度： total RNA濃度不低于400 ng/μg。 （3）total RNA樣品請置于-20℃保存；請?zhí)峁﹖otal RNA樣品具體濃度、體積、制備時間、溶劑名稱及物種來源。請同時附上QC數(shù)據(jù)，包括電泳膠圖、分光光度或Nanodrop儀器檢測數(shù)據(jù)。 （4）樣品請置于1.5 ml管中，管上注明樣品名稱、濃度以及制備時間，管口使用Parafilm封口。建議使用干冰運輸，并且盡量選用較快的郵遞方式，以降低運輸過程中樣品降解的可能性。
4mRNA的純化分離方法？
答：進(jìn)行mRNA研究中，首先需要對樣本進(jìn)行總RNA抽提，抽提得到的RNA除含有mRNA外，還含有rRNA和tRNA，為防止這兩類RNA對轉(zhuǎn)錄組研究的影響，因此我們需要對mRNA進(jìn)行分離純化。真核細(xì)胞的mRNA分子zui顯著的結(jié)構(gòu)特征是具有5’端帽子結(jié)構(gòu)（m7G）和3’端的Poly(A)尾巴。絕大多數(shù)哺乳類動物細(xì)胞mRNA的3’端存在20-30個腺苷酸組成的Poly（A）尾，通常用Poly（A+）表示。這種結(jié)構(gòu)為真核mRNA的提取，提供了極為方便的選擇性標(biāo)志，寡聚（dT）纖維素或寡聚（U）瓊脂糖親合層析分離純化mRNA的理論基礎(chǔ)就在于此。 mRNA的分離方法較多，其中以寡聚（dT）-纖維素柱層析法zui為有效，已成為常規(guī)方法。此法利用mRNA 3’末端含有Poly（A+）的特點，在RNA流經(jīng)寡聚（dT）纖維素柱時，在高鹽緩沖液的作用下，mRNA被特異地結(jié)合在柱上，當(dāng)逐漸降低鹽的濃度時或在低鹽溶液和蒸餾水的情況下，mRNA被洗脫，經(jīng)過兩次寡聚（dT）纖維柱后，即可得到較高純度的mRNA。
5、使用Solexa進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序時，樣本RNA如何進(jìn)行片段化處理？ cDNA插入片段長度的選擇？
答：Solexa轉(zhuǎn)錄組測序文庫構(gòu)建時采用的打斷Buffer對RNA樣本進(jìn)行片段化處理，這種方法充分利用RNA對二價陽離子的敏感性，具有穩(wěn)定性好的優(yōu)點，通過這種方法打斷能得到更加均勻的覆蓋率。mRNA-seq可以既可以采用單端測序（single read） 還可以采用雙端測序（ paired end），對于單端測序來說片段長度150-200bp是理想的長度范圍，對于雙端測序來說片段長度推薦300-500bp，由于兩端加入了Solexa的錨定序列和引物序列，樣品準(zhǔn)備完成后所獲得的產(chǎn)物長度比插入的cDNA長度要長。
6、文庫準(zhǔn)備過程中，反轉(zhuǎn)錄引物的選擇？
答：在進(jìn)行cDNA合成過程中，經(jīng)常用到的有兩種引物：oligodT引物和隨機(jī)引物。
在RNA反轉(zhuǎn)錄過程中使用oligodT引物進(jìn)行擴(kuò)增可以保證擴(kuò)增產(chǎn)物包括mRNA的3'末端，減少rRNA的干擾，但是采用oligodT 引物擴(kuò)增有一個問題，就是擴(kuò)增片段的長度偏短和擴(kuò)增產(chǎn)物所包含的信息量偏向3’端的問題，之所以有長度偏短，一方面與RNA完整性有關(guān)，但zui重要的限制在于逆轉(zhuǎn)錄酶的延伸能力。 用oligodT 引物擴(kuò)增出來的片段長度短，雖然都有mRNA的3'端，但是序列信息多位于3'-UTR附近，若擴(kuò)增序列太短，則有用信息很少，不利于序列的識別和分析。
使用Random primer擴(kuò)增，雖然擴(kuò)增偏短長度也很短， 但是由于它的逆轉(zhuǎn)錄并不一定在mRNA的末端起始，而是在隨機(jī)位置起始，所以它的擴(kuò)增片段帶有更多CDS的信息，但是如果是用總RNA逆轉(zhuǎn)錄的話，有可能會受到rRNA的干擾。
采用Solexa進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序，測序文庫準(zhǔn)備過程中，由于實驗之前已經(jīng)采用oligodT微磁珠進(jìn)行純化，而且mRNA已經(jīng)進(jìn)行了片段化處理后才進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄，因此反轉(zhuǎn)錄只能采用隨機(jī)引物進(jìn)行cDNA的合成，如果采用oligodT進(jìn)行擴(kuò)增，只能得到mRNA的3'端序列，無法得到完整的mRNA序列。
7、 Solexa進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序，測序文庫的制備方法及質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)？
答：首先會樣本進(jìn)行質(zhì)量檢測，檢測合格后，對樣本進(jìn)行測序前處理，構(gòu)建測序文庫，構(gòu)建步驟為：（1）首先利用oligodT微珠純化mRNA；（2）將純化得到的mRNA進(jìn)行片段化處理；（3）利用逆轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄合成cDNA*鏈；（4）以cDNA*鏈為模板合成雙鏈cDNA；（5）對雙鏈cDNA進(jìn)行末端修復(fù)并在3’末端加’A”；（6）在DNA片段的兩端連接上特定的測序接頭；（7）割膠純化連接好的cDNA片段（一般回收200-500bp之間的片段）；（8）利用高保真聚合酶擴(kuò)增測序文庫；（9）檢測測序文庫。對于測序文庫，需要進(jìn)行質(zhì)量控制，一般通過 Aligent Technologies 2100分析儀和電泳觀察兩種方法檢測測序文庫的大小，純度及濃度。
8、轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果的影響因素？
答：RNA的降解嚴(yán)重影響測序的質(zhì)量，RNA降解后，加入poly-A后無法捕獲純化mRNA，因此，隨機(jī)引物反轉(zhuǎn)錄無法得到全部的cDNA，導(dǎo)致測序結(jié)果出現(xiàn)明顯的3‘-和5’-偏向。文庫中的poly-A多聚物的存在會對測序信號產(chǎn)生干擾，影響測序結(jié)果的準(zhǔn)確性；同時由于轉(zhuǎn)錄組中轉(zhuǎn)錄本的豐度不一致，實驗前需要對樣本進(jìn)行均一化處理，否則高豐度的表達(dá)基因會掩蓋低豐度表達(dá)基因，導(dǎo)致尋找新基因失敗或者是獲得大量無意義的重復(fù)序列。
9、轉(zhuǎn)錄組測序需要多大的測序量才能得到有意義的結(jié)果？
答：轉(zhuǎn)錄組測序前，需要對物種轉(zhuǎn)錄組的大小進(jìn)行評估，評估方法如下： （1）對于有reference genome的物種，可以分析基因組信息，統(tǒng)計編碼基因的個數(shù)，及其堿基數(shù)，從而估計物種轉(zhuǎn)錄組的大小，另外可以查詢相關(guān)或相近物種轉(zhuǎn)錄組研究的文獻(xiàn)，作為參考。
（2）對于無reference genome的物種則只能參考相近物種的轉(zhuǎn)錄組大小。
由于轉(zhuǎn)錄組需要進(jìn)行表達(dá)量的分析，因此在轉(zhuǎn)錄組測序中不推薦覆蓋度，在進(jìn)行不同基因和不同實驗間的基因表達(dá)差異分析時，人們提出了RPM和RPKM的概念。 RPM（Reads Per Million reads）即每百萬reads中來自于某基因的reads數(shù)，考慮了測序深度對讀段計數(shù)的影響。RPKM（Reads Per Kilo bases per Million reads）是每百萬reads中來自于某基因每千堿基長度的reads數(shù)。因此，在確定轉(zhuǎn)錄組的測序量時，以產(chǎn)生的讀長數(shù)目做依據(jù)，參照轉(zhuǎn)錄組大小，估計需要的讀長數(shù)目，來確定轉(zhuǎn)錄組需要的測序量。
10、如何處理轉(zhuǎn)錄組測序中存在的系統(tǒng)噪音和偏差？
答：雖然深度測序技術(shù)的準(zhǔn)確性較以前的技術(shù)有了很大提高，但仍然存在錯誤和噪聲。比如內(nèi)含子區(qū)內(nèi)有一些不連續(xù)的reads，很可能由系統(tǒng)噪聲造成，如樣品污染、測序錯誤和不恰當(dāng)?shù)膔ead定位策略等。另外，外顯子區(qū)域內(nèi)的read信號分布有時也很不均勻。有文獻(xiàn)報道，序列組成尤其是GC含量、RNA二級結(jié)構(gòu)等也有可能是導(dǎo)致read不均勻分布的原因。這些噪聲和分布偏好將影響新基因的識別和對剪接異構(gòu)體形式和表達(dá)水平推斷。 合理地建模RNA-seq數(shù)據(jù)中的系統(tǒng)噪聲和偏好是解決上述問題zui有效的辦法?；镜乃悸房梢允牵菏紫雀鶕?jù)實驗原理尋找可能產(chǎn)生系統(tǒng)噪音或偏差的因素，并盡可能將這些因素轉(zhuǎn)化成可量化的特征，如序列特征、二級結(jié)構(gòu)等；然后，將用實驗數(shù)據(jù)對這些特征做統(tǒng)計分析，構(gòu)造和訓(xùn)練模型，用模型來對數(shù)據(jù)進(jìn)行校正。需要注意的是，某些偏好是由當(dāng)前的測序技術(shù)和分析方法共同造成的，難以*消除。在這種情況下，后續(xù)處理和解釋時需要充分意識到這種偏好可能對生物學(xué)結(jié)論帶來的影響，必要時通過補(bǔ)充其他實驗來驗證和修正通過高通量測序得到的生物結(jié)論。
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